Anticorps monoclonal de lapin anti-CD262/TRAILR2 de souris pour la cytométrie en flux - Q9QZM4

Spécifications et paramètres essentiels du produit

Contexte biologique : fonction et localisation du membre 10B de la superfamille des récepteurs du facteur de nécrose tumorale

• Identité de la protéine : Le membre 10B de la superfamille des récepteurs du facteur de nécrose tumorale (TNFRSF10B), également connu sous les noms de récepteur de mort 5 (DR5), CD262, TRAILR2, KILLER, TRICKB et MK, est un membre de la superfamille des TNFR.
• Fonction apoptotique : Agit comme récepteur du ligand cytotoxique TNFSF10/TRAIL. Après la liaison du ligand, la molécule adaptatrice FADD recrute la caspase-8 au niveau du récepteur, formant le complexe de signalisation induisant la mort (DISC), qui active protéolytiquement la caspase-8 et initie l’apoptose via les caspases en aval.
• Signalisation non apoptotique : Favorise l’activation de NF-kappa-B, reliant la signalisation de TRAIL aux voies pro-inflammatoires et de survie.
• Réponse au stress du RE : Essentiel à l’apoptose induite par le stress du réticulum endoplasmique (RE), intégrant ainsi les signaux de stress cellulaire à la voie de mort extrinsèque.
• Localisation subcellulaire : Principalement localisé à la membrane cellulaire, ce qui est cohérent avec son rôle de récepteur transmembranaire.
• Spécificité tissulaire : Fortement exprimé dans le cœur, les poumons et les reins, ce qui indique une possible régulation tissulaire de la sensibilité à TRAIL.
• Caractéristiques structurales : Contient des répétitions riches en cystéines caractéristiques des TNFR, des ponts disulfure et des sites de glycosylation ; possède un peptide signal et une hélice transmembranaire, ce qui est cohérent avec une glycoprotéine transmembranaire de type I.

Conseils expérimentaux et recommandations techniques

• Cet anticorps est destiné à la cytométrie en flux (FC). Comme l’immunogène correspond aux acides aminés 53 à 170 du domaine extracellulaire, il devrait reconnaître le récepteur de surface natif sur les cellules de souris.
• Pour une coloration optimale en cytométrie en flux, il est recommandé de titrer l’anticorps afin de déterminer la concentration de saturation et d’utiliser des contrôles d’isotype appropriés ainsi que des colorants d’exclusion des cellules vivantes/mortes.
• Comme l’expression de TNFRSF10B peut être modulée par le stress cellulaire ou la stimulation par TRAIL, validez les conditions de coloration dans les lignées cellulaires ou les cellules primaires pertinentes, traitées selon des paramètres expérimentaux contrôlés.
• Pour la coloration intracellulaire ou l’étude de l’internalisation du récepteur, des étapes supplémentaires de perméabilisation peuvent être nécessaires ; vérifiez la compatibilité avec le conjugué fluorophorique.

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