Anticorps monoclonal de souris anti-CD11b humain pour cytométrie en flux - P11215

Spécifications et paramètres principaux du produit

Contexte biologique : fonction et localisation de l’intégrine alpha-M

• L’intégrine alpha-M (ITGAM, CD11b) s’associe à l’intégrine bêta-2 (ITGB2/CD18) pour former l’antigène macrophagique-1 (Mac-1) ou le récepteur 3 du complément (CR3), qui intervient dans les interactions adhésives des monocytes, des macrophages et des granulocytes et facilite l’absorption des particules et des agents pathogènes recouverts de complément. Références associées : PMID:20008295 PMID:9558116
• Elle sert de récepteur au fragment iC3b du composant 3 du complément, en reconnaissant probablement le peptide R-G-D, et se lie également au fibrinogène et au facteur X via des peptides spécifiques de la chaîne gamma.
• Elle régule la migration des neutrophiles, contribuant ainsi aux réponses immunitaires innées. Références associées : PMID:28807980
• En association avec ITGB2, elle est nécessaire à l’activation des neutrophiles amorcés par le TNF et médiée par CD177-PRTN3. Références associées : PMID:21193407
• Elle reconnaît la molécule d’adhésion intercellulaire 1 (ICAM1), permettant l’adhésion entre les neutrophiles stimulés et les cellules endothéliales. Références associées : PMID:1980124
• Elle pourrait également réguler l’apoptose induite par la phagocytose dans les neutrophiles extravasés, contribuer au développement des mastocytes et contrôler la production de superoxyde par la microglie au cours du développement cérébral (par homologie).
• La localisation subcellulaire est principalement la membrane cellulaire et les radeaux membranaires.
• Elle est principalement exprimée dans les monocytes et les granulocytes, avec une expression protéique confirmée dans les neutrophiles.

Conseils expérimentaux et recommandations techniques

• L’immunogène est un peptide synthétique dérivé du CD11b humain ; il convient de vérifier que l’anticorps reconnaît la conformation native de l’intégrine alpha-M sur les cellules vivantes par cytométrie en flux.
• Pour les applications de cytométrie en flux, optimisez la préparation des cellules, le titrage de l’anticorps et les témoins isot ypiques appropriés afin de garantir une coloration spécifique.
• Utilisez des monocytes ou des granulocytes du sang périphérique humain comme témoins positifs, et des lymphocytes (qui n’expriment pas CD11b) comme témoins négatifs.
• Les protocoles de fixation et de perméabilisation peuvent affecter l’accessibilité de l’épitope ; validez-les dans le système d’échantillons concerné.

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