Anticorps monoclonal de lapin anti-Villin-1 pour WB, IF-P, IHC-P, ELISA - P09327

Spécifications et paramètres essentiels du produit

Contexte biologique : fonction et localisation de la Villin-1

• La Villin-1 (VIL1, également connue sous les noms VIL ou D2S1471) est une protéine spécifique des cellules épithéliales, modulant l’actine et codée chez l’humain par le gène VIL1.
• Elle régule la dynamique de l’actine en nucléant la polymérisation de l’actine, en regroupant les filaments d’actine, en coiffant leurs extrémités barbées et en clivant les filaments ; ces activités sont modulées par le Ca²⁺, le phosphatidylinositol 4,5-bisphosphate (PIP2) et l’acide lysophosphatidique (LPA).
• La Villin-1 est un composant structurel majeur des microvillosités des cellules épithéliales intestinales et des cellules épithéliales du tubule proximal rénal ; elle est également présente dans les microvillosités canaliculaires des hépatocytes.
• Au niveau subcellulaire, elle se localise dans le cytoplasme, le cytosquelette ainsi qu’aux extrémités et dans les tiges de plusieurs prolongements cellulaires riches en actine, notamment les microvillosités, les filopodes, les lamellipodes et les fronces membranaires.
• Elle joue un rôle essentiel dans le maintien de la morphologie des cellules épithéliales, la promotion de la migration et de l’invasion cellulaires, ainsi que la protection contre l’apoptose dans l’épithélium gastro-intestinal, probablement en préservant l’intégrité mitochondriale.
• La Villin-1 stimule la motilité, la chimiotaxie et la réparation des lésions des cellules épithéliales induites par le facteur de croissance des hépatocytes (HGF).
• Lors d’une infection par Shigella flexneri, son activité de clivage de l’actine est exploitée afin d’accroître la motilité et la dissémination bactériennes au sein de la cellule hôte.
• La protéine subit un épissage alternatif et une phosphorylation ; la liaison du LPA déclenche une phosphorylation médiée par SRC, qui inhibe toutes les fonctions de modulation de l’actine.

Conseils expérimentaux et recommandations techniques

• L’immunogène est constitué de la protéine Villin-1 humaine de pleine longueur (acides aminés 1 à 827), ce qui permet potentiellement à l’anticorps de reconnaître les formes phosphorylées et non phosphorylées ; validez la détection des états de phosphorylation pertinents dans votre système modèle.
• Pour le Western blot (WB), prévoyez une bande unique autour de 93 kDa ; l’anticorps réagit avec les échantillons humains, murins et de rat, ce qui le rend adapté aux études interespèces.
• En immunofluorescence sur des cellules fixées et perméabilisées (IF-P), la Villin-1 marquera généralement les microvillosités et les autres prolongements riches en actine ; optimisez les conditions de fixation et de perméabilisation en fonction de votre type cellulaire.
• Pour l’immunohistochimie sur des coupes incluses en paraffine (IHC-P), une récupération antigénique peut être nécessaire ; testez les protocoles standards à base de citrate ou d’EDTA.
• Pour l’ELISA, envisagez d’utiliser cet anticorps comme réactif de capture ou de détection ; associez-le à un anticorps de détection compatible pour les formats sandwich.

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