Anticorps polyclonal anti-Ythdc1 de souris pour WB - E9Q5K9

Spécifications et paramètres principaux du produit

Contexte biologique : Fonction et localisation de la protéine contenant le domaine YTH 1

• Reconnaît et se lie aux ARN contenant de la N6-méthyladénosine (m6A), agissant comme un régulateur clé de l'épissage alternatif. Il favorise l'inclusion d'exons en recrutant SRSF3 sur les sites m6A, ou empêche le saut d'exons en interférant avec la liaison de SRSF10 (PubMed:29262316, PubMed:29799838). Références associées : PMID:29262316 PMID:29799838
• Facilite l'export nucléaire des ARNm contenant du m6A via des interactions avec SRSF3 et NXF1.
• Contrôle l'homéostasie de la S-adénosyl-L-méthionine en modulant l'expression des transcrits MAT2A, probablement via la liaison au m6A au sein de ces ARNm (PubMed:29262316). Références associées : PMID:29262316
• Participe à l'inactivation aléatoire du chromosome X en se liant à l'ARN Xist modifié par m6A et en favorisant sa fonction répressive de la transcription.
• Essentiel pour le développement de la lignée germinale, spécifiquement le développement des spermatogonies chez les mâles et la croissance/maturation des ovocytes chez les femelles, principalement via son rôle régulateur de l'épissage alternatif (PubMed:29799838). Références associées : PMID:29799838
• Indépendamment de son activité de lecteur m6A, il stabilise PPARG en empêchant l'ubiquitination médiée par ARIH2, favorisant ainsi le développement du tissu adipeux brun et l'homéostasie énergétique (PubMed:40355558). Références associées : PMID:40355558
• Se localise principalement dans le noyau et les speckles nucléaires, ce qui est cohérent avec ses rôles dans le traitement des ARNm.
• Les modifications post-traductionnelles incluent la phosphorylation et la conjugaison de type ubiquitine (formation de liaison isopeptidique).

Guide expérimental et conseils techniques

• L'immunogène correspond aux acides aminés 597-736 de Ythdc1 de souris, une région C-terminale qui peut être accessible dans les conformations protéiques natives et dénaturées. Cette région exclut le domaine YTH connu (environ les résidus 400–540), réduisant potentiellement la réactivité croisée avec d'autres protéines lectrices de m6A, bien qu'une validation expérimentale soit recommandée.
• Pour le transfert Western (WB), anticipez une bande à environ 85 kDa dans les lysats de tissus de souris. Utilisez des conditions réductrices et validez avec des témoins positifs et négatifs appropriés (par exemple, tissus ou cellules knockout pour Ythdc1) pour confirmer la spécificité.
• Dans les applications ELISA, la protéine recombinante utilisée comme immunogène peut servir de témoin positif standard pour optimiser les concentrations de revêtement et les dilutions d'anticorps.
• Étant donné qu'il s'agit d'un anticorps polyclonal, il peut reconnaître plusieurs épitopes, fournissant un signal robuste mais aussi un risque accru de bruit de fond. Incluez des agents de blocage et des étapes d'optimisation adaptés aux anticorps polyclonaux dans votre protocole.

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