Anticorps monoclonal anti-CD2 humain () pour cytométrie en flux - P06729

Spécifications et paramètres essentiels du produit

Contexte biologique : fonction et localisation de CD2

• CD2 (antigène de surface des lymphocytes T CD2) est une glycoprotéine de la superfamille des immunoglobulines, également désignée sous les noms LFA-2, T11, récepteur SRBC ou Leu-5.
• Il assure l’adhésion cellulaire en se liant aux ligands CD58 (LFA-3) et CD48, facilitant les interactions des lymphocytes T avec les cellules présentatrices d’antigènes, les cellules cibles et les autres lymphocytes.
• L’interaction CD2–CD58 renforce la synapse immunologique, contribuant à l’activation des lymphocytes T, à la costimulation et à la transduction des signaux.
• CD2 est exprimé sur les lymphocytes T et les cellules tueuses naturelles (NK), où il intervient à la fois dans l’adhésion et la signalisation intracellulaire.
• Son domaine cytoplasmique est relié à des kinases intracellulaires et à des protéines adaptatrices, jouant un rôle essentiel dans le déclenchement de l’activation des lymphocytes T.
• Sur le plan structural, CD2 comprend deux domaines extracellulaires de type Ig, une hélice transmembranaire à passage unique et une courte queue cytoplasmique contenant des motifs de signalisation.
• Au niveau subcellulaire, CD2 se localise sur la membrane plasmique et contient des ponts disulfure ainsi que des sites de glycosylation liés à l’azote.
• Les principales modifications post-traductionnelles comprennent la glycosylation ; la protéine forme des rosettes avec les érythrocytes de mouton grâce à son activité de récepteur SRBC.

Conseils expérimentaux et recommandations techniques

• L’immunogène utilisé couvre le domaine extracellulaire (acides aminés 25–209) et cible la région de liaison au ligand ; l’anticorps devrait donc reconnaître CD2 à la surface cellulaire.
• En tant que conjugué direct , cet anticorps est optimisé pour la cytométrie en flux sur des cellules vivantes ou fixées, sans nécessiter de réactifs secondaires.
• Titrer l’anticorps (par exemple, 0,1–5 µg par test) afin de déterminer la concentration de marquage optimale pour votre système expérimental.
• Valider le marquage sur des PBMC humaines ou des populations de lymphocytes T/NK isolées ; utiliser des contrôles isotopiques appropriés pour définir les fenêtres.
• Pour les panels multicolores, vérifier la compatibilité spectrale de l’(excitation à 491 nm, émission à 518 nm) avec les autres fluorophores.

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