Anticorps polyclonal Anti-Fbx32/FBXO32 pour WB, IF-P, ELISA - Q969P5

Spécifications et paramètres principaux du produit

Contexte biologique : Fonction et localisation de Fbx32/FBXO32

• FBXO32, également connue sous le nom d'Atrogin-1 ou MAFbx, est une protéine F-box only 32 qui agit comme composant de reconnaissance du substrat du complexe ligase E3 ubiquitine-protéine SCF (SKP1-CUL1-protéine F-box).
• Elle médie l'ubiquitination et la dégradation protéasomale ultérieure des protéines cibles, jouant un rôle clé dans l'atrophie musculaire squelettique.
• Parmi ses substrats identifiés figurent TERF1, le facteur de transcription KLF4 (supprimant la transcription de MERTK pour réguler négativement l'efferocytose des macrophages) et ANXA1 (promouvant l'apoptose induite par le LPS et la dysfonction mitochondriale) ; ces interactions ont été rapportées par similarité.
• FBXO32 médie la stabilisation de la protéine cycline D1 via une ubiquitination liée à la 'Lys-27'. Références associées : PMID:40307251
• La protéine se localise à la fois dans le cytoplasme et le noyau.
• Elle est spécifiquement exprimée dans les tissus musculaires cardiaque et squelettique.
• La pertinence pour les maladies est indiquée par des associations en base de données entre FBXO32 et des variants de maladies humaines, et elle est classée dans la voie de conjugaison de l'ubiquitine.

Guide expérimental et conseils techniques

• L'anticorps a été produit contre un fragment recombinant couvrant les acides aminés 206–355 du FBXO32 humain ; cette région se situe dans la partie C-terminale de la protéine, ce qui peut influencer l'accessibilité de l'épitope en fonction de la conformation de la protéine ou de ses partenaires d'interaction.
• Pour le Western blot, une bande spécifique proche de 42 kDa est attendue ; cependant, la migration peut être affectée par des modifications post-traductionnelles ou une dégradation protéique, validez donc avec des contrôles positifs appropriés (par exemple, des lysats de tissu musculaire squelettique ou cardiaque) et des marqueurs de poids moléculaire.
• En immunofluorescence (IF-P), prévoyez une coloration à la fois nucléaire et cytoplasmique basée sur la distribution subcellulaire rapportée ; incluez des protocoles de fixation et de perméabilisation appropriés pour détecter les deux pools.
• Pour l'ELISA, envisagez d'utiliser l'anticorps comme réactif de capture ou de détection avec un système tampon standard, et optimisez la concentration de l'anticorps et les conditions d'incubation pour votre format de dosage spécifique.
• La réactivité croisée avec le FBXO32 de souris a été confirmée, le rendant adapté aux études dans des modèles murins d'atrophie musculaire ; cependant, vérifiez toujours les signaux spécifiques à l'espèce dans votre propre système expérimental.

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