Anticorps polyclonal anti-DDAH2 pour WB, IHC-P, IF/ICC, ELISA - O95865

Spécifications et paramètres principaux du produit

Contexte biologique : Fonction et localisation du DDAH2

• Le DDAH2 est une hydrolase putative qui n'hydrolyse pas la diméthylarginine asymétrique (ADMA), un inhibiteur endogène de la synthèse d'oxyde nitrique, ce qui le distingue de l'enzyme active DDAH1. Références associées : PMID:21493890, PMID:37296100

• Dans les cellules endothéliales, le DDAH2 induit l'expression du facteur de croissance de l'endothélium vasculaire (VEGF) via la phosphorylation médiée par la PKA du facteur de transcription SP1, indépendamment de l'oxyde nitrique et de l'activité NOS.

• Le DDAH2 améliore la sécrétion d'insuline pancréatique en régulant positivement la sécrétagogine/SCGN, une protéine d'amarrage des vésicules d'insuline, via l'activation transcriptionnelle médiée par SP1.

• Lors d'une infection virale, le DDAH2 se relocalise dans les mitochondries où il favorise la fission mitochondriale en activant le DNM1L, inhibant ainsi la réponse immunitaire innée médiée par MAVS. Références associées : PMID:33850055

• La localisation subcellulaire comprend le cytoplasme et les mitochondries, ce qui correspond à ses rôles dans la transduction du signal et la dynamique mitochondriale.

• Le DDAH2 est largement exprimé dans les tissus, avec les niveaux les plus élevés dans le cœur, le placenta, le poumon, le foie, le muscle squelettique, le rein et le pancréas, et une expression très faible dans le cerveau.

• Les mots-clés associés au DDAH2 incluent l'activité hydrolase (prédite), la localisation mitochondriale et cytoplasmique, et l'identification par protéomique, reflétant ses fonctions non enzymatiques émergentes.

Guide expérimental et conseils techniques

• L'immunogène correspond à la protéine DDAH2 humaine de pleine longueur (résidus 1–285), suggérant une détection potentielle du DDAH2 endogène entre espèces basée sur les données de réactivité croisée (humain, souris, rat).
• Pour le Western blot, envisagez d'utiliser des lysats de contrôle positif provenant de tissus à forte expression de DDAH2 (par exemple, cœur ou placenta) et validez la taille de la bande à environ 30 kDa.
• En immunohistochimie (IHC-P), optimisez les conditions de démasquage antigénique et incluez des contrôles isotypiques pour minimiser la coloration non spécifique.
• Pour l'immunofluorescence (IF/ICC), les protocoles de fixation et de perméabilisation peuvent nécessiter une optimisation pour préserver l'accessibilité de l'épitope et la morphologie cellulaire.
• Les applications ELISA peuvent être utilisées pour la détection quantitative ; pour un ELISA sandwich, il est conseillé de l'associer à un anticorps de détection apparié.
• Validez toujours l'anticorps dans le contexte expérimental spécifique et le système d'échantillon, car les performances peuvent varier selon les conditions de test.

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