Anticorps monoclonal de lapin anti-DcR1/CD263 pour WB, IHC-P, FC, ELISA - O14798

Spécifications et paramètres principaux du produit

Contexte biologique : Fonction et localisation de DcR1/CD263

• DcR1/CD263, codé par le gène TNFRSF10C, est un membre de la superfamille des récepteurs du facteur de nécrose tumorale, également connu sous le nom de TRAIL-R3, LIT et TRID. Il fonctionne comme un récepteur leurre antagoniste pour le ligand cytotoxique TRAIL (Apo-2L).
• Contrairement aux récepteurs TRAIL fonctionnels TNFRSF10A et TNFRSF10B, DcR1 ne possède pas de domaine de mort intracellulaire. En entrant en compétition pour la liaison de TRAIL, il inhibe l'apoptose et protège les cellules de la mort cellulaire induite par TRAIL.
• La protéine est ancrée à la membrane cellulaire via une liaison glycophosphatidylinositol (GPI) et contient un peptide signal, plusieurs domaines riches en cystéine répétés, et une ou plusieurs liaisons disulfure.
• DcR1 est exprimé à des niveaux plus élevés dans les tissus normaux par rapport aux lignées cellulaires tumorales, avec une expression notable dans les lymphocytes du sang périphérique, la rate, le muscle squelettique, le placenta, le poumon et le cœur.
• Les mots-clés d'UniProt incluent apoptose, membrane cellulaire, liaison disulfure, glycoprotéine, ancrage GPI, lipoprotéine, récepteur et signal, reflétant ses caractéristiques structurelles et fonctionnelles.
• Les modifications post-traductionnelles comprennent la glycosylation N-liée et l'attachement de l'ancre GPI, qui sont critiques pour la localisation membranaire et la stabilité.

Guide expérimental et conseils techniques

• L'immunogène correspond au domaine extracellulaire (acides aminés 26-235) du DcR1/CD263 humain, suggérant que l'anticorps reconnaît la région de liaison au ligand des formes membranaires et solubles.
• Pour le Western blot, une bande proche de 27 kDa est attendue dans des conditions réductrices. En raison de la glycosylation potentielle, envisagez de tester les échantillons dans des états réduits et non réduits pour optimiser la détection.
• Pour la cytométrie en flux, utilisez des cellules vivantes non fixées pour préserver l'accessibilité de l'épitope de surface. Titrez l'anticorps pour déterminer la concentration de marquage optimale.
• En immunohistochimie (paraffine), une récupération antigénique peut être nécessaire. Validez la spécificité du marquage en comparant avec des contrôles positifs connus (ex. : rate normale) et négatifs.
• Pour l'ELISA, cet anticorps peut être utilisé comme réactif de capture ou de détection. Associez-le à un clone non compétitif pour le développement d'un ELISA sandwich.

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