ADORA2A pAb lapin - P29274

Spécifications et paramètres principaux du produit

Contexte biologique : Fonction et localisation de l'adénosine récepteur A2a (ADORA2A)

• ADORA2A code pour l'adénosine récepteur A2a, un membre de la famille des récepteurs couplés aux protéines G (RCPG).
• Il agit comme récepteur pour l'adénosine, et son activité est médiée par les protéines G, principalement Gs, qui activent l'adénylyl cyclase et augmentent les niveaux d'AMPc.
• Le récepteur est prédit pour contenir sept domaines transmembranaires, caractéristique des RCPG, et possède une liaison disulfure et des sites de glycosylation.
• Au niveau sous-cellulaire, ADORA2A est localisé sur la membrane cellulaire, ce qui est cohérent avec son rôle dans la transduction du signal de l'adénosine extracellulaire.
• La protéine est soumise à l'ubiquitination (conjugaison Ubl), suggérant une régulation par la dégradation protéasomique.
• ADORA2A est largement étudié dans le contexte des maladies neurodégénératives, de la fonction cardiovasculaire et de l'inflammation, en raison de ses rôles modulateurs.
• Les noms alternatifs incluent A2aR, RDC8 et ADORA2.
• La séquence de l'immunogène recombinant correspond aux acides aminés 300 à 400 de la protéine humaine (NP_000666.2), une région probablement située dans le domaine C-terminal intracellulaire.

Conseils expérimentaux et astuces techniques

• L'immunogène est un peptide synthétique issu de l'extrémité C-terminale intracellulaire (aa 300–400), ce qui peut produire un anticorps adapté pour détecter les niveaux totaux de protéine ADORA2A dans des échantillons dénaturés (WB).
• Pour le WB, une bande d'environ 45 kDa est attendue, bien que des modifications post-traductionnelles puissent provoquer des décalages.
• Compte tenu de la réactivité croisée avec la souris et le rat, l'anticorps est adapté pour des études sur ces espèces ; cependant, un alignement de séquence de la région de l'immunogène est recommandé pour confirmer l'homologie.
• Pour l'IF/ICC, les conditions de fixation et de perméabilisation doivent être optimisées, car la cible est une protéine transmembranaire ; il est conseillé de tester à la fois la fixation au méthanol et au formaldéhyde.
• Incluez toujours des contrôles appropriés (par exemple, lignées cellulaires knockout ou blocage par peptide) pour confirmer la spécificité dans votre système expérimental.

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